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研究生:陳鴻吉
研究生(外文):Chen Hung Chi
論文名稱:觀賞鳳梨RAPD遺傳親緣性分析及擎天屬龍鳳品種之細胞培養與體胚再生
論文名稱(外文):Phyllogenetic Analysis by RAPD Markers and Somatic Embryogenesis in Cell Suspension Culture of Ornamental Bromeliads
指導教授:許圳塗許圳塗引用關係
指導教授(外文):Shii Chou Tou
學位類別:碩士
校院名稱:國立臺灣大學
系所名稱:園藝學研究所
學門:農業科學學門
學類:園藝學類
論文種類:學術論文
論文出版年:2002
畢業學年度:90
語文別:中文
論文頁數:73
中文關鍵詞:逢機增殖DNA片段遺傳親緣性鳳梨科細胞懸浮培養體胚再生
外文關鍵詞:Randomly Amplified Polymorphic DNAGenetic RelationshipBromeliaceaeCell Suspension CultureSomatic Embryogenesis
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中南美洲原生觀賞用鳳梨與臺灣重要商業品種之遺傳親緣性分析
本試驗以市場上商業價值較高的7屬18種觀賞鳳梨為材料,進行逢機增殖DNA片段(Randomly Amplified Polymorphic DNA, RAPD)的分析。由20個RAPD 引子所產生的條帶之中,共獲得119個具多型性的分子標誌。在屬間鑑別上,4個為Cryptanthus屬所特有,3個為Dyckia屬所特有,2個為Guzmania屬所特有,12個為Neoregelia屬所特有,1個為Tillandsia屬所特有,1個為Vriesea屬所特有。在種間鑑別上,30個多型性的分子標誌為各種間所特有之差異條帶,其它則為多型性條帶,可以用來分辨不同的物種,尤其是外觀相似的不同物種。利用Jaccard方法所求出不同樣本之間的相似度及UPGMA方法所建立出來的親緣關係圖,除結果顯示與形態分類學一樣之外,本試驗結果所得之屬與種專一性分子標誌更可提供日後觀賞鳳梨栽培品種鑑別良好工具。
擎天屬龍鳳品種之細胞培養與體胚再生
以觀賞鳳梨擎天屬龍鳳品種未成熟之小花附屬器官作為初級培殖體,接種於半固體培養基1/2MS添加Citric acid 0.1 mg/ml 、2,4-D 0.2-1.5 mg/L或合併含有NAA 0.5 mg/L,以幼花瓣培殖體癒合組織發生率可達80%,逆分化效果佳。2-3個月逆分化為癒合組織並出現有原胚狀體。將胚性癒合組織移置於TB5添加2,4-D 0.5 mg/L的液態增生培養基中,以110 rpm懸浮振盪培養,約4個月可得到均質之胚性細胞系。懸浮細胞族群經篩選後,平板培養於培養皿,以SH半固體培養基參試生長素及細胞分裂素組合,其中組合低量0.2 mg/L NAA + 0.2 mg/L 2ip +0.1 mg/L kinetin可誘導較多之胚狀體,並成熟抽出芽體。由1/30 ml PCV胚性細胞團,平均可再生200-400芽體,若將生長素省略培養生成之胚苗較易有畸形芽體。將成熟胚狀體或芽體移至1/2SH補充0.2 mg/L NAA + 0.2 mg/L 2ip固態培養基中,則可長出根系良好之小植株,移出瓶外健化處理,成活率可達近100%。
Genetic Relationship between Ornamental Bromeliads of Centric South America and Commerical Cultivars in Taiwan.
The RAPD polymorphic markers were used to analyze the genetic similarity among eighteen collected accessions and cultivars attributed to seven genera of Bromeliaceae. A total of 119 markers were obtained from 20 RAPD primers. In genus identification, there are four, three, two, twelve, one, and one markers specific to Cryptanthus, Dyckia, Guzmznia, Neoregelia, Tillandsia, and Vriesea, respectively. Besides, all the eighteen tested accessions could be identified with thirty proposed markers. The result suggests that these thirty markers are useful tools for genera and species or cultivars discrimination, especially for species with high morphological similarity. The dendrogram established by Jaccard and UPGMA methods is coincident with the taxonomy. Moreover, our studies suggest a potential molecular marker to identify the cultivars of Bromeliaceae.
Somatic Embryogenesis in Cell Suspension Culture of Ornamental Bromeliads.
The various parts in young floret of ornamental bromeliad Guzmania cv. Cheery were used as explants inoculated on 1/2 MS medium supplemented with citric acid 0.1 mg/ml and 2,4-D 0.2-1.5 mg/L combinated with NAA 0.5 mg/L. The petal explants were potential to dedifferentiate embryogenic callus as high as 80 % by 2-3 months after culture. The callus with proembryoids were transferred into TB5 liquid medium added with 2,4-D 0.5 mg/L, cultured on 110 rpm shaker. The heterogeneous suspension cells were achieved about 2 months after suspension culture, which were competent to proliferate in apolar growth cycle, and formation of amorphic preembryogenic masses. The screened PEMs were plated on filter paper or gellified stratum enriched with half storgth basal salt of SH medium supplemented with NAA 0.2 mg/L, 2ip 0.2 mg/L and kinetin 0.1 mg/L, and induced multiple somatic embryo formation in each mini-callus. The mature somatic embryos were initially to in sprout, and acquired 200-400 shoots per dish inoculated with 1/30 PCV. The somatic embryos or emerging shoots were transferred on 1/2 SH medium after with NAA 0.2 mg/L and 2ip 0.2 mg/L benefit to converte into vigorous plantlets. The survival in exvitro transplant of the plantlets approached close to 100 % under mist propagation condition.
內 容 目 次
一、 前言..………………………………………………………………………...1
二、 前人研究..…………………………………………………………………...3
(一) 鳳梨科植物之遺傳親緣性分析…………………………………………3
(二) 鳳梨科植物之體外繁殖…………………………………………………6
A. 無菌播種……………………………………………………………...6
B. 短縮莖培養…………………………………………………………...7
C. 葉片培養……………………………………………………………...8
D. 組培苗根培養………………………………………………………...9
E. 花器培養…………………………………………………….………..9
三、 材料與方法………………………………………………………………...12
(一) 中南美洲原生觀賞用鳳梨與臺灣重要商業品種之遺傳親緣性分析..12
A. 參試材料…………………………………………………………….12
B. 基因組DNA的抽取………………………………………………...12
C. 引子篩選………………………………………….…………………13
D. PCR (Polymerase Chain Reaction) 聚合反應………………………13
E. 資料分析…………………………………………………….………14
(二) 擎天屬龍鳳品種之細胞培養與體胚再生……………………………..15
A. 參試材料…………………………………………………………….15
B. 取材與消毒……………………………………………….…………15
C. 試驗內容………………………………………….…………………15
(1) 花器培養逆分化胚性癒合組織之誘導………………………..15
(2) 胚性細胞懸浮再生系統之建立………………………………..16
(3) 平板培養………………………………………………………..16
(4) 小植株建立……………………………………………………..16
(5) 移植……………………………………………………………..17
四、 結果………………………………………………………………………...25
(一) 中南美洲原生觀賞用鳳梨與臺灣重要商業品種之遺傳親緣性分析..25
(二) 擎天屬龍鳳品種之細胞培養與體胚再生……………………………..28
(1) 花器培養逆分化胚性癒合組織之誘導………………………..28
(2) 胚性細胞懸浮再生系統之建立………………………………..29
(3) 平板培養………………………………………………………..30
(4) 小植株建立……………………………………………………..31
(5) 移植……………………………………………………………..32
五、 討論………………………………………………………………………...54
(一) 中南美洲原生觀賞用鳳梨與臺灣重要商業品種之遺傳親緣性分析..54
(二) 擎天屬龍鳳品種之細胞培養與體胚再生……………………………..57
(1) 花器培養逆分化胚性癒合組織誘導之影響因子……………..57
(2) 胚性細胞懸浮再生系統之建立………………………………..58
(3) 平板培養………………………………………………………..61
(4) 胚苗轉換………………………………………………………..62
(5) 移植……………………………………………………………..63
六、 中文摘要…………………………………………………………………...64
(一) 中南美洲原生觀賞用鳳梨與臺灣重要商業品種之遺傳親緣性分析..64
(二) 擎天屬龍鳳品種之細胞培養與體胚再生……………………………..65
七、 英文摘要…………………………………………………………………...66
(一) 中南美洲原生觀賞用鳳梨與臺灣重要商業品種之遺傳親緣性分析..66
(二) 擎天屬龍鳳品種之細胞培養與體胚再生……………………………..67
八、 參考文獻…………………………………………………………………...68
九、 附表(龍鳳擎天鳳梨癒合組織、細胞懸浮培養及體胚發生之基本培養基
組成)………………………………………………………………………73
圖 目 錄
圖 1. RAPD分析參試之18種觀賞鳳梨樣品植株及其開花形態……………18
圖 2. 觀賞鳳梨龍鳳擎天開花特性(A)及其小花花器構造(B)………………...24
圖 3. 十八種觀賞鳳梨以OPB-5引子進行RAPD分析所得之條帶型………..33
圖 4. 十八種觀賞鳳梨樣本RAPD分析所得到的叢群分析樹狀圖…………...34
圖 5. 利用RAPD分子標誌相似性分群所得之觀賞鳳梨在中南美洲地理分佈圖…………………………………………………………………………..35
圖 6. 龍鳳擎天鳳梨花器培養誘導癒合組織生長情形………………………..39
圖 7. 龍鳳擎天鳳梨花瓣衍生之胚性癒合組織在 TB5 液體培養基細胞懸浮培養生長情形……………………………………………………………..41
圖 8. 觀賞鳳梨球體期之胚性懸浮細胞系以平板培養誘導體胚發生之情形..43
圖 9. 龍鳳擎天鳳梨平板培養叢生胚萌芽情形………………………………..45
圖 10.體胚苗健化培養及溫室生長情形………………………………………..46
圖 11.觀賞鳳梨胚性細胞再生系統……………………………………………..48
圖 12.外控胞外pH對細胞生長之影響…………………………………………49
表 目 錄
表 1. 參試18種觀賞鳳梨樣品及其原生地…………………………………….23
表 2. 適合觀賞鳳梨RAPD分析之20個引子序列……………………………..36
表 3. 參試觀賞鳳梨RAPD共同標誌、屬間及種間專一性分子標誌………….37
表 4. 十八種觀賞鳳梨物種之RAPD條帶以Jaccard方法分析所得之相似度..38
表 5. 2,4-D與NAA對觀賞鳳梨“Cherry”花器培養誘導癒合組織之效應….51
表 6. 2,4-D與椰子水對觀賞鳳梨“Cherry”懸浮細胞培養之影響……………...52
表 7. NAA、2ip及kinetin對觀賞鳳梨“Cherry”平板培養胚體生長之影響……55
八、參考文獻(Reference)
阮育雄. 1997. 鳳梨花世界. 台灣花卉園藝 113:42-45。
阮育雄. 1997. 鳳梨花世界(六). 台灣花卉園藝 124:38-41。
呂政璋. 2001. 三倍體香蕉 cv. Raja 胚性細胞極化與非極化生長之調控與質量化體胚生產. 國立台灣大學研究所碩士論文.
周紹蓮. 1989. 蜻蜓鳳梨的組織培養. 國立台灣大學研究所碩士論文. pp.35。
邱金春、林昭雄. 1987. 觀賞鳳梨組織培養繁殖之研究. 花卉生產改進研討會專集p.130-134. 桃園區農業改良場發行。
邱金春、林昭雄. 1990. 觀賞鳳梨組織培養繁殖之研究. 農試所鳳山園藝分所報告。
邱金春. 1991. 蜻蜓鳳梨(Aechmea fasciata Baker)微體繁殖之研究. 中華農業研究40(3):274-279。
林秀雄編撰. 1996. 民國八十六年台灣盆花調查報告. 台灣省政府農林廳編印. pp.76。
馬溯軒 許圳塗. 1988. 植物再生與繁殖及改良. 園藝作物組織培養之應用研討會專集. p.1-18. 國立台灣大學園藝系. 台北。
馬溯軒 王淑娥. 1977. 鳳梨之組織培養繁殖. 中國園藝23:107-113。
馬溯軒. 1968. 鳳梨之切頂加速繁殖. 中國園藝14(1,2):30-34。
章錦瑜. 1999. 最新室內觀賞植物. 淑馨出版社. 台灣台北. P.95-125.
黃怡菁. 1994. 香蕉細胞懸浮培養及原生質體培養體胚誘導. 國立台灣大學研究所博士論文.
楊晴惠. 1999. 觀賞鳳梨組織培養不定芽再生之研究. 國立台灣大學研究所碩士論文.
鍾仁彬. 2001. 香蕉胚性細胞懸浮培養胞外pH變化與極化非極化生長調控及縐折生物反應器機能之探討. 國立台灣大學研究所博士論文.
Branka V. and D. Vinterhalter. 1994. True-to-the type in vitro propagation of Aechmea fasciata Baker. Sci. Hort. 57:253-263.
Carneiro, L. A., R. F. G. Arango. 1999. In vitro regeneration from leaf explants of Neoregelia cruenta an endemic bromeliad from Eactern Brazil. Pl. Cell Tissue Org. Cult. 55: 79-83.
Dellaporta, S. L., J. Wood and J. B. Hicks. 1983. A plant DNA minipreparation: Version Ⅱ, Plant Mol. Biol. Rep. 1:19-21.
DeWald, M. G., G. A. Moore, W. B. Sherman, and M. H. Evans. 1988. Production of pineapple plants in vitro. Plant Cell Rep. 7:535-537.
Duval, M. F., J. L. Noyer, X. Perrier, G. C. d''Eeckenbrugge and P. Hamon. 2001. Molecular diversity in pineapple assessed by RFLP markers. Theoretical & Applied Genetics. 102(1):83-90.
El-Tarras, A., Y. A. Hossni and A. A. Elbanna. 1999. Application of RAPD analysis for identification and genetic analysis of somaclonal variation in Ananas comous variegatum. Egypt. J. Hort. 26: 97-108.
Escalona M., J. C. Lorenzo, B. Gonzalez, M. Daquinta, J. L. Gonzalez and Y. Borroto. 1999. Pineapple (Ananas comosus L. Merr) micropropagation in temporary immersion systems. Plant Cell Rep. 18:743-748.
Fitchet-Purnell, M. 1993. Maximum utilization of pineapple crowns for micropropagation. Acta Hort. 275:261-266.
Fitchet, M. 1990. Clonal propagation of queen and smooth cayenne pineapple. Acta Hort. 275:261-266.
Hirimburegama, K. and L. P. J. Wijesinghe. 1992. In vitro growth of Ananas comosus L. Merr(pineapple) shoot apices on different media. Acta Hort. 319:203-208.
Hosoki, T. and T. Asahira. 1980. In vitro propagation multliplication of bromeliads in liquid culture. HortScience 15:603-604.
Huang, I. C., C. T. Shii and S. S. Ma. 1999. Cycling growth characteristic in embryogenic suspension culture derived from male inflorescence callus of banana AAA subgroup Cavendish and AAB cultivars. Seminaire Franco-Chinois sur de Biotechnologies 7-9 Oct 1996. CIRAD. France.
Jaccard, P. 1908. Nouvelles recherches surla distribution florale. Bul. Soc. Sci. Naturale 44 : 223-270.
Jones, T. B. and T. Murashige. 1974. Tissue culture propagation of Aechmea fasciata, Baker and other Bromeliads. Proc. Inter. Plant Prop. Soc. 24:117-126.
Jollifffe, A. G. 1981. Propagation and culture of Bromeliads. Proc. Inter. Plant Prop. Soc. 31:324-329.
Kiss, E., J. Kiss, G. Gyulai, and L. E. Heszky. 1995. A novel method for rapid micropropagation of pineapple. HortScience. 30:127-129.
Kukuczanka, K. and B. Czstka. 1989. Propagation of some species of the Bromeliaceae family cultured in vitro. Acta Hort. 251:167-172.
Kropf, D. L., S. R. Bisgrove and W. E. Hable. 1999. Establishing a growth axis in fucoid algae. Trends in Plant Science. 4(12):490-494.
Mathew, V. H. and T. S. Rangan. 1979. Multiple plantlets in lateral bud and leaf explant in vitro cultures of pineapple. Sci. Hort. 11:319-328.
Mekers, O. 1973. Tissue culture of Bromeliads. Int. Plant Prop. Soc. 23:47-55.
Mekers, O. 1977. In vitro propagation of some Tillandsiodeae (Bromeliaceae). Acta Hort. 78:311-320.
Mekers, O. 1984. In vitro culture techniques in a breeding program of Bromeliaceae. Eucarpia. Potplant Breeding. p.43-46.
Mekers, O. and J. G. van Onsem. 1983. In vitro propagation Viresea cultivars in comparison with other ornamental Bromeliaceae. Acta Hort. 131:125-130.
Miller, R. 1991. Bromeliads. In:Ball Red Book. p398-401. Geo, J.Ball Publ. West Chicago.
Pierik, R. L. M., H. M. Steegmans and J. Handriks. 1984. The influence of NAA on the growth of in vitro cultival seedling of Bromeliaceae. Scientia Hort. 24:193-199.
Ruas, P. M., C. F. Ruas, D. J. Fairbanks, W. R. Andersen and J. R. S. Cabral. 1995. Genetic relationship among four varieties of pineapple, Ananas comosus, revealed by random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis. Brazilian J. Genet. 18: 413-416.
Ruas, C. F., P. M. Ruas and J. R. S. Cabral. 2001. Assessment of genetic relatedness of the genera Ananas and Pseudananas confirmed by RAPD markers. Euphytica. 119(3):245-252.
Sripaoraya, S., N. W. Blackhall, R. Marchant, J. B. Power, K. C. Lowe and M. R. Davey. 2001. Relationships in pineapple by random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis. Plant Breeding. 120(3):265-267.
Teng, W. L. 1997. An alternative propagation method of ananas through nodule culture. Plant Cell Rep. 16:454-457.
Van Dijck, R., M. De Proft and J. De Greef. 1988. Role of ethlene and cytokinins in the in the initiation of lateral shoot growth in bromeliads. Plant Physiol. 86:836-840.
Vinterhalter, B. and D. Vinterhelter. 1994. True to the type in vitro propgation of Aechmea fasciata. Scientia Hort. 57:253-263.
Westland Production Information. 1987. Bromeliaceae. WPI Vol 216:1-22. Naaldwvijk. Netherland.
Wilde, J., R. Waugh and W. Powell. 1992. Genetic fingerprinting of Theobroma clones using randomly amplified polymorphic markers. Theor. Appl. Genet. 83: 871-877.
Williams, J. G. K., A. P. Kubelik, K. J. Livak, J. A. Rataski and S. V. Tingey. 1990. DNA polymorphisms amplifed by arbiturary primers are useful as genetic markers. Nucleic Acid Res. 18: 6531-6535.
Zimmer, K. and W. Pieper. 1976. Methods and problems of clonal propagation of bromeliads in vitro. Acta Hort. 64:25-29.
QRCODE
 
 
 
 
 
                                                                                                                                                                                                                                                                                                                                                                                                               
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1. 馬溯軒 王淑娥. 1977. 鳳梨之組織培養繁殖. 中國園藝23:107-113。
2. 邱金春. 1991. 蜻蜓鳳梨(Aechmea fasciata Baker)微體繁殖之研究. 中華農業研究40(3):274-279。
3. 黃秀君(民90)。「知識經濟」對學校教育之影響與因應策略。教育資料與研究,41,29-34。
4. 黃季仁 (民80)。科技發展與教育革新。資訊與教育,21,30-36。
5. 陳幸仁(民85)。學校文化與學校效能關係的探討。國民教育, 36 , 56-62。
6. 陳禹辰(民88)。知識管理的意涵、特性與程序。中國勞工月刊,88(12),33-35。
7. 陳依蘋(民88)。知識管理的建立與挑戰。會計研究月刊,169,15-19。
8. 張志明、劉淑娟(民89)。知識管理在學校營繕工程之運用:以花蓮縣國民中小學為例。花蓮師院學報,11,55-81。
9. 張菀珍(民89)。民間非營利組織辦理成人教育活動現況與省思。成人教育,46,24-32。
10. 張光進 (民85)。廿一世紀新興的教育企業:全球知識交換中心。文教新潮,1(1),1-5。
11. 崔之元(民88)。知識經濟:二十一世紀的希望。明報月刊,34,38-49。
12. 翁榮桐(民89)。從知識管理論教學資源中心之設立。教師天地,107,66-73。
13. 徐大偉(民90)。知識經濟概念在學校經營與管理之應用。研習資訊,18卷4期,70-78。
14. 邱兆偉(民77)。教育績效責任在美國。教育文粹,17,1-22。
15. 邱貴發 (民87)。網路世界中的學習:理念與發展。教育研究資訊雙月刊,6(1),20-27。